Zorkamilk.ru

Домашние наши друзья
8 просмотров
Рейтинг статьи
1 звезда2 звезды3 звезды4 звезды5 звезд
Загрузка...

Гистомоноз птиц: диагностика, лечение, методы профилактики

Лабораторная диагностика гистомоноза индейки

Гистомоноз – широко распространённая паразитарная болезнь кур, индейки, фазанов, перепёлки и даже страусов. В связи с запретом использования нитроимидазола, нитрофуранов и препаратов мышьяка для лечения птицы, это забытая «старая» инфекция стала регистрироваться в странах Европейского Союза, США, странах Азии. Поставки в РФ инкубационного яйца и молодняка птицы из стран, неблагополучных по данной болезни, могут кардинально изменить ситуации по гистомонозу, и к этому нужно быть готовым. Уже сейчас регистрируются отдельные случаи гистомоноза в птицеводческих предприятиях различных форм собственности. Эффективных средств профилактики и лечения гистомоноза на данный момент не разработано, поэтому ранняя и точная лабораторная диагностика служит отправной точкой в проведении своевременных и направленных противоэпидемических мероприятий.

Гистомоноз (инфекционный энтерогепатит, синдром чёрной головы) – это паразитарная болезнь куриных, вызываемая возбудителем Histomonas meleagridis. Впервые гистомоноз у индейки описал S. Cushman в 1893 году [2]. Возбудитель относится к семейству Monocercomonadidae, класс Trichomonaida [3].

Разработка эффективных в отношении Histomonas meleagridis химических препаратов в середине прошлого века способствовала снижению частоты выделения возбудителя из коммерческих стад птицы. Ситуация изменилась с введением запрета на применение нитроимидазола, нитрофуранов и препаратов мышьяка в странах Европейского Союза, США и странах Азии [8].

Болезнь характеризуется поражением слизистой слепых кишок и печени, с развитием гнойно-некротических процессов и типичных гранулём. Гистомонозом болеют куры, индейка, фазаны, перепёлка и даже страусы в возрасте от 2-дневного до 2-3 месячного возраста. Смертность индейки может достигать 100%. При высокой заболеваемости кур смертность от болезни составляет 10-20%.

Возбудитель является факультативным анаэробом. Цикл развития паразита включает жгутиковую и амебовидную стадии развития.

Гистомонады неустойчивы во внешней среде, быстро погибают под действием дезинфицирующих средств. В яйцах нематод Heterakis gallinarum сохраняются длительное время.

Источником инвазии является больная птица, которая выделяет во внешнюю среду возбудителя с помётом и яйцами гетеракисов. Основной путь заражения через желудочно-кишечный тракт. Птицы заглатывают возбудителя и инвазированные яйца гетеракисов. В слепой кишке птицы гистомонады высвобождаются из личинки гетеракисов и начинают размножаться простым делением надвое. При нахождении гистомонад в просвете слепой кишки развивается серозный энтерит. Через 7-10 дней с момента инвазии возникает сильное воспаление с некрозом тканей слепой кишки. На 10 день в процесс вовлекается печень.

Диагноз на гистомоноз индеек ставят комплексно с учётом клинических признаков болезни, патологоанатомических изменений и результатов лабораторной диагностики.

У заболевшей индейки наблюдают угнетение, слабость, понижение аппетита, взъерошенность оперения, свисание крыльев, диарею. Кожа на голове приобретает синюшный цвет – чёрная голова. Возникают парезы и параличи. При хроническом течении болезни симптомы сглажены. Слепые кишки увеличены, плотные, по форме напоминают колбаски. Печень увеличена, полнокровная под капсулой видны мелкие узелки.

Через два дня после заражения H. meleagridis выделяются во внешнюю среду с помётом птицы и могут быть обнаружены при культивировании смывов с клоаки на искусственных питательных средах [5].

При экспресс-диагностике готовят раздавленную каплю из суспензии патологического материала и исследуют под микроскопом. Мазки-отпечатки из пораженной ткани окрашивают по Романовскому-Гимзе. При микроскопии выявляют эксцентрично расположенные ядра, иногда вблизи ядерной оболочки расположены два зерна, чаще соединённые между собой нитью.

Целью нашей работы являлась разработка протокола лабораторной диагностики гистомоназа индейки в помощь практикующим специалистам. Представлены материалы по отбору, транспортировке и подготовке проб для исследования, излагаются методы окрашивания препаратов и интерпретация результатов патологоанатомического и микроскопического исследований.

Материалы и методы

Нативный материал Материалом для исследований служили печень и слепые отростки кишечника индейки в возрасте 90 суток, полученные из хозяйства подозрительного по данному заболеванию. Материал не подвергался замораживанию и доставлен в термоконтейнере при 4-6 °C в течение 24 часов.

Микроскопия нативного материала Кусочки слепой кишки с содержимым измельчают, заливают фосфатно-буферным раствором или 0,85% физиологическим раствором рН 7,2-7,4, перемешивают. Суспензию отбирают микробиологической петлёй на предметное стекло, закрывают покровным и просматривают под микроскопом при увеличении ?400.

Нативный препарат необходимо исследовать как можно раньше с момента отбора пробы, поскольку утрачивается подвижность возбудителя, клетка округляется и получение однозначного результата затрудняется.

Приготовление мазковотпечатков и окрашивание по Романовскому-Гимзе Пинцетом осторожно захватывают кусочек печени, опускают в спирт 96 °, обжигают, срезают кусочек и поверхностью среза прикасаются к предметному стеклу в двух – трех местах, делая ряд мазков-отпечатков.

Мазки-отпечатки фиксируют в спирте этиловом 96 ° 10-15 минут, высушивают на воздухе и окрашивают.

Перед окрашиванием мазков готовый жидкий краситель по Романовскому-Гимзе разводят из расчета 1-2 капли красителя на 1 мл дистиллированной воды. Мазки окрашивают 20-25 минут при 37 °C во влажной камере (закрытая чашка Петри с увлажнённым фильтром на дне). После окрашивания мазки промывают в дистиллированной воде, сушат на воздухе и исследуют при масляной иммерсии.

Исследованы кишечник и печень от индейки 4 производственных участков.

При патологоанатомическом исследовании наблюдали вздутие всех отделов кишка. Содержимое слепых отростков кишечника жидкое, желтовато-зеленоватого цвета, пенистое. На слизистой оболочке разлитые кровоизлияния, язвы (рисунок 1 и 2). Вокруг язвы слизистая гиперемирована и имеет вид приподнятого валика. Все образцы печени полнокровные, увеличены, рыхлой консистенции, под капсулой – мелкие узелки белого цвета (рисунок 3).

Суспензию слепых отростков кишечника с содержимым исследовали методом «раздавленной» капли под микроскопом при увеличении ?400. В поле зрения наблюдали единичных слабоактивных гистомонад, которые при движении изменяли форму с округлой на овальную. Внутри клеток различали ядро и вакуоли (рисунок 4).

В мазках-отпечатках печени, окрашенных по РомановскомуГимзе, наблюдали округлые образования красно-фиолетового цвета с эксцентрично расположенным ядром (рисунок 5). Из четырех образцов печени первого участка в трех обнаруживали возбудителя, из четырех образцов печени второго участка в двух обнаруживали возбудителя, из четырёх образцов печени третьего участка в одном обнаруживали паразита и из четырёх образцов печени четвёртого участка в двух обнаруживали паразита.

При постановке диагноза «гистомоноз» необходимо учитывать патологоанатомические и лабораторные методы исследования.

При патологоанатомическом исследовании отмечают поражения слизистой оболочки слепых отростков кишечника в виде мелких очаговых и разлитых кровоизлияний, язв различной формы и глубины.

Слизистая бугриста, покрыта дифтеритическими слоистыми, плотными, творожистыми наложениями, закрывающими просвет кишечника. Печень увеличена, полнокровна, под капсулой видны мелкие узелки [1].

Поражения печени при естественных вспышках гистомоноза вариабельны. Они могут быть небольшими и многочисленными, крупными и перекрывающимися или могут быть в виде опухолей как при лейкозе [7].

Читать еще:  Индюки: разведение, содержание, уход в домашних условиях

Печень цыплят может быть без изменений.

При патологоанатомическом исследовании слепых отростков кишечника и печени индейки нами выявлены признаки характерные для гистомоноза индейки.

Среди лабораторных методов исследования наиболее простым и доступным является микроскопия. Микроскопия производится в нативном и в окрашенном по Романовскому-Гимзе препарате.

Однако как отмечает M. Hess [6] микроскопическое обнаружение подвижных гистомонадов в слепой кишке птицы может быть затруднено из-за неочищенного фекального материала или присутствия других простейших.

Обнаружение живых гистомонад зависит от времени доставки материала в лабораторию. Чем быстрее доставлен материал и приготовлены мазки, тем выше шансы увидеть живого паразита.

R.W. Gerhold et al. [4] продемонстрировали, что уже через 24 часа после смерти хозяина H. meleagridis нельзя культивировать in vitro и это будет препятствием для изоляции возбудителя в лаборатории. Тем не менее, исследование этих авторов подтвердило успешное культивирование паразита из материала после хранения в культуральной среде при 30 °C в течение 72 ч.

В нашем исследовании при микроскопии нативного препарата гистомонады обнаруживались в виде единичных клеток овальной или округлой формы, совершающих поступательное движение. В мазкахотпечатках печени, окрашенных по Романовскому-Гимзе, гистомонады наблюдали в виде клеток округлой или овальной формы с эксцентрично расположенным ядром.

Таким образом, в результате проведённой работы установлен порядок отбора проб для лабораторной диагностики на гистомоноз индейки, дана интерпретация методов микроскопического и патологоанатомического анализа, что является ценным для практикующих ветеринарных специалистов.

Т. Г. Титова, канд. ветеринар. наук, И. М. Бирюков, Е. А. Симонова
«Всероссийский научно-исследовательский ветеринарный институт птицеводства» – филиал Федерального государственного бюджетного научного учреждения Федерального научного центра «Всероссийский научно-исследовательский и технологический институт птицеводства» Российской академии наук, г. Санкт-Петербург, Ломоносов

1. Коровин, Р. Н. Лабораторная диагностика болезней птиц: Справочник / Р. Н. Коровин, В. П. Зеленский, Г. А. Грошева.– Москва: Агропромиздат, 1989.– 256 с.

2. Cushman, S. The production of turkeys / S. Cushman // R. I. Agric. Exp. Sta. Bull.– 1893.– 25.– P. 89-123.

3. Gerbod, D, Phylogenetic position of the trichomonad parasite of turkeys, Histomonas meleagridis (Smith) Tyzzer, inferred from small subunit rRNA sequence / V. P. Edgcomb, C. Noel, L. Zenner, R. Wintjens, P. Delgado-Viscogliosi, M. E. Holder, M. L. Sogin, E. Viscogliosi, // J Eukaryot. Microbiol.– 2001.– V. 48.– P. 498-504.

4. Gerhold, R.W. Establishment of culture conditions for survival of Histomonas meleagridis in transit. / R.W. Gerhold, L. A. Lollis, R. B. Beckstead, L. R. McDougald // Avian Dis.– 2010.– V. 54 – P. 948-950.

5. Hess, M., Grabensteiner, E., Liebhart, D. Rapid transmission of the protozoan parasite Histomonas meleagridis in turkeys and specifc pathogen free chickens following cloacal infection with a mono-eukaryotic culture / M. Hess, E. Grabensteiner, D. Liebhart // Avian Pathol.– 2006a.– V. 35.– P. 280-285.

6. Hess, M. Histomonas meleagridis – New insights into an old pathogen / M. Hess, D. Liebhart, I. Bilic, P. Ganas // Veterinary Parasitology.– 2015.– V. 208 – P. 67-76.

7. McDougald, L. R. Blackhead Disease (Histomoniasis) in Poultry: A Critical Review / L. R. McDougald // Avian diseases.– 2005.– V. 49.– P. 462-476.

Патологоморфологическая диагностика гистомоноза бройлеров

Патологоморфологическая диагностика гистомоноза бройлеров

Шмакова О.В., ГНУ СибНИИП Россельхозакадемии, с. Морозовка, Омская область, Россия

Исследованы мазки-отпечатки патологически изменённой пе­чени цыплят-бройлеров. Окраска гематоксилином и эозином позволяет выявлять оболочки и ядра паразитов окружённые красной протоплазмой и уверенно дифференцировать гистомоноз.

Гистомоноз — инвазионное заболевание птиц, характеризующееся гнойно-некротическим воспалением слепых кишок и очаговыми некрозами печени.

Это заболевание молодняка многих видов птиц, но чаще болеют индюшата в возрасте от двух недельного до трёх месячного возраста. Восприимчивы также павлины, цыплята, куропатки, тетерева, цесарки и др. птицы. Имеются данные о том, что могут болеть гуси и утки [1, 2].

Хроническое течение гистомоноза чаще отмечается у птицы более старших возрастов и длится несколько месяцев. Сведения о проявлении этой инвазии при выращивании бройлеров на предприятиях закрытого типа отсутствуют и при выращивании бройлеров на предприятиях закрытого типа специфическая про­филактика гистомоноза не проводится.

Заражение происходит через яйца нематод Heterakis gallinarum паразитирующих в слепых кишках. Механическими переносчиками являются насекомые.

Возбудитель Histomonas meleagridis – простейший организм с двумя фазами развития. В первой, вегетативной фазе подвижен, имеет округлую форму с тремя — четырьмя жгутиками. Аксостиль, ундулирующая мембрана и цитостом отсутствуют. Максимальные размеры в вегетативной фазе до 21 мкм. Движение паразита толчкообразное, обычно вращательное.

Вторая фаза – амебовидная, отождествляется с инвазионным периодом жизни гистомонад. В тканях гистомонады размножаются делением надвое. Ядро большей частью расположено эксцентрично, протоплазма зернистая. При потере воды жгутиковый или амебовидный паразит приобретает устойчивую форму.

Попадая в пищеварительный тракт, гистомонады внедряются в толщу слизистой оболочки слепых кишок, там размножаются и вызывают альтеративное воспаление слизистой, мышечной и серозной оболочек [3]. Язвенный тифлит приводит к прободению стенки слепой кишки и развитию слипчивого перитонита.

Специфические патологоанатомические изменения, имеющие важное диа­гностическое значение обнаруживаются в слепых кишках и в печени. Поражен­ный участок кишки утолщен, на поверхности бугристый, часто с пятнистым мра­морным желто-коричневым рисунком. Нередко обнаруживаются спайки между слепыми кишками и петлями тонкого отдела кишечника. Пораженный участок твёрдый и не эластичный (при сгибании переламывается по месту прободения стенки кишки). В просвете поражённой кишки содержится желтовато-белая слоистая масса гнойно-фибринозного экссудата или творожистый-крошковатый грязно-серый субстрат. В печени, на поверхности и на разрезе, обнаруживаются бело-желтые участки величиной от просяного зерна до лесного ореха и более.

Материалы и методы. Исследована печень, которая при плановом убое по результатам ветеринарного осмотра направлена на техническую утилизацию, а так же мазки-отпечатки участков печени с очагами некроза. Отпечатки после фиксации окрашивали азур-эозином и гематоксилин-эозином.

Результаты исследований. При патологоанатомическом исследовании пе­чени было установлено что конфигурация органа не нарушена, доли хорошо обособлены, цвет пёстрый из-за наличия большого количества мелких серовато жёлтых участков (фото 1).

Фото 1. Милиарные некрозы в печени бройлера.

Рельеф органа не ровный, так как серо-жёлтые участки вы­ступают над по­верхностью. Капсула печени прижизненных повреждений и на­ложений не име­ла. Края органа всегда были округлыми и это было выражено тем сильнее, чем больше в печени было возвышающихся серовато жёлтых участков. Консистен­ция органа неоднородная, так как серо жёлтые участки плотнее остальной па­ренхимы органа. Поверхность разреза была влажной и имела пёстрый рису­нок, такой же, как и на поверхности печени. По размеру эти серо-жёлтые вклю­чения не превышали четырёх миллиметров, никакого рисунка не имели, от здо­ровой ткани печени ничем не отделялись, при растирании в пальцах легко раз­давливались.

Читать еще:  Чем пропаивать индюшат в первые дни жизни - добавки, препараты

В мазках-отпечатках с участков печени окрашенных азур-эозином обнару­жены объекты овальной формы, имеющие по периметру оболочку неравной толщи­ны и плотности окраски (фото 2). Самые крупные имели длину до 18 мкм.

Фото 2. Отпечаток печени бройлера. Окраска азур — эозином, объектив 40, оку­ляр 10.

Фото 3. Отпечаток печени бройлера. Окраска гематоксилином и эозином, объектив 40, окуляр 10.

Внутреннее содержимое в центральной части не было окрашено, а вокруг него на метахромазийном фоне имелись радиально ориентированные крупные включения круглой или овальной формы лилового цвета. Очевидно, что лиловый цвет обусловлен эозином и частично азуром.

В мазках-отпечатках окрашеных гематоксилином и эозином были выявлены объекты так же преимущественно овальной формы, длиной от 15 до 18 мкм окружённые ничем не окрашенной зоной лизированой ткани печени (фото 3). В большинстве случаев в центре на фоне ярко лиловой однородной протоплазмы располагалось одно окрашенное гематоксилином ядро овально-удлинённой формы. Благодаря выявлению ядер, результат окраски оказался более информативным.

Выводы. Оба метода окраски выявляли паразитов во второй фазе, но диф­ференцировать гистомонад позволяет окраска гематоксилином и эозином, при об­наружении ядер.

Полученные данные свидетельствуют о наличии гистомоноза в промыш­ленных стадах бройлеров, что необходимо учитывать при планировании и проведении лечебно-профилактических мероприятий.

При диагностике гистомоноза необходимо в случае обнаружения характерных патологоанатомических изменений для обнаружения паразитов проводить микроскопию мазков-отпечатков патологических очагов печени с окрас­кой их гематоксилином и эозином.

Список литературы.

Ветеринарная Энциклопедия [Текст] / Гл. ред. К. И. Скрябин. – М.: Советская Энциклопедия, 1969. – Т. 2. – С. 486-488. – (Энциклопедии. Словари. Справочники).

Бакулин В.А. Болезни птиц [Текст] / В.А. Бакулин. – СПб., 2006. – С. 360-364.

Иллюстрированный атлас болезней птиц [Текст]. – М.: «Издательский дом Медол», 2006. – С.166-167.

Гистомоноз птиц

Болезнь молодняка птиц, характеризуется гнойно-некротическим воспалением слепых кишок и очаговым поражением печени.

Возбудитель. Возбудитель Histomonas meleagridis принадлежит к семейству Trichomonadidae типа Sarcomastigophora. В процессе развития паразит проходит жгутиковую и амебовидную стадии. Жгутиковая стадия имеет шарообразное тело диаметром 12 — 21 мкм с 1 — 4 жгутиками. В отличие от трихомонад, аксостиль, ундулирующая мембрана и цитостом отсутствуют. У амебовидной формы, диаметр тела которой 8 — 30 мкм, жгутики отсутствуют.

Цикл развития. Возбудитель гистомоноза паразитирует в тканях кишок и печени, где активно размножается двойным делением. В печень паразиты проникают через систему воротной вены. Заражение птицы происходит алиментарно при заглатывании с кормом или водой трофозоитов или яиц возбудителей гетеракоза, инвазированных одноклеточными организмами. Последние являются факультативными анаэробами.

Эпизоотологические данные. Болезнь широко распространена в СНГ. Могут болеть куры, цесарки, перепелки, павлины, фазаны, гуси, утки, дикие птицы. Более восприимчив молодняк с 2-дневного до 2 — 3-месячного возраста. Болезнь возникает при нарушении ветеринарно-санитарных требований и технологии выращивания цыплят. Источником возбудителя инвазии является больная и переболевшая птица. Как правило, заболевание возникает в середине или в конце лета. Осенью и зимой может болеть взрослая птица при снижении естественной резистентности вследствие неудовлетворительных условий содержания и кормления. Во внешней среде паразиты быстро погибают, однако в яйцах гельминтов они сохраняются свыше одного года. Переносчиками одноклеточных организмов являются дождевые черви.

Патогенез и иммунитет. Возбудители повреждают сначала слизистую оболочку слепых кишок, вызывая катарально-некротическое ее воспаление. В дальнейшем процесс переходит на тонкие кишки, железистый желудок и другие органы. Паразиты могут быстро проникать в толщу стенки кишок, повреждая как мышечную, так и серозную оболочки. Это приводит к развитию перитонита. Нарушаются пищеварение и всасывание питательных веществ, барьерная функция кишок. Усиливается перистальтика, которая способствует диарее. Продукты воспаления и метаболизма паразитов всасываются в кровь, вызывая интоксикацию. Вследствие проникновения возбудителей в печень появляются некротические очаги величиной с лесной орех. Нарушается обмен веществ, наступает гипогликемия.

Птица, которая выздоровела, продолжительное время остается паразитоносителем и приобретает нестерильный иммунитет.

Симптомы болезни. Инкубационный период длится 1 — 3 недели. Течение болезни острое и хроническое.

Острое течение наблюдается преимущественно у молодняка. Птица малоактивная, перья тускнеют, крылья опущены, аппетит снижен. Через 2 — 4 суток появляется понос, фекалии зеленовато-бурого цвета с неприятным запахом. С течением времени птица худеет, развиваются застойные явления. Кожа на голове становится темно-синей, у молодняка — черной. Болезнь длится 1 — 3 недели.

У взрослой птицы течение болезни хроническое, что проявляется общей слабостью и исхуданием.

Патологоанатомические изменения. Слепые кишки увеличены, заполнены творогообразной массой. На слизистой оболочке выявляют язвы. Часто отмечают фибринозный перитонит. Печень гиперемирована, увеличена. В паренхиме видны узелки серо-бурого цвета.

Диагностика. Учитывают клинические признаки, эпизоотологические данные, патологоанатомические изменения и обязательно проводят микроскопические исследования с целью выявления возбудителей инвазии. Для этого берут содержимое пораженных слепых кишок или соскобов со слизистой оболочки и рассматривают в темном поле микроскопа. Можно готовить мазки, которые окрашивают методом Романовского. При необходимости делают посевы на среду Петровского.

Гистомоноз дифференцируют от эймериоза, трихомоноза, туберкулеза, лейкоза, колибактериоза.

Лечение. Применяют специфические препараты из группы имидазола: тинидазол (аметин, плетил, тинида, фасижин); нитазол (аминитразол, трихоцид, трихекс) в дозах 75 — 100 мг/кг в смеси с комбикормом на протяжении 4 — 7 дней, а с профилактической целью — в половинной дозе в течение 7 — 10 дней.

Профилактика и меры борьбы. Молодняк нужно выращивать отдельно от взрослой птицы с соблюдением санитарно-гигиенических и зоотехнических норм; содержать птицу на сетчатом полу; своевременно проводить дегельминтизации против гетеракоза. Для химиопрофилактики применяют энтеросептол в дозе 0,02 г/кг.

Если вы нашли ошибку, пожалуйста, выделите фрагмент текста и нажмите Ctrl+Enter.

Источник: под ред. В.Ф. Галата и А.И. Ятусевича. Руководство по ветеринарной паразитологии. Минск: ИВЦ Минфина, 2015. — 496 с.

Как лечить гистомоноз у индюшат и кур, первые признаки болезни и меры профилактики

Гистомоноз индеек и других птиц отряда куриных – распространенное паразитарное заболевание, вызываемое одноклеточным организмом Histomonas meleagridis.

Читать еще:  Синусит у индюков: причины, лечение, профилактика

К поражению этим видом трофозоитов наиболее восприимчив молодняк птицы. Инфицирование вызывает повреждение слепых кишок и печени с формированием гнойно-некротических участков, при несвоевременном лечении смертность от болезни у индюшат может составить 100%. Другие названия инвазии – энтерогепатит, «черная голова».

Симптомы гистомоноза

Срок инкубации заболевания длится от недели до месяца, острая форма сопровождается следующими симптомами:

  • полный или частичный отказ от корма;
  • повышенная жажда;
  • угнетенное состояние;
  • перья теряют блеск, взъерошены;
  • шатающаяся походка;
  • птенцы сидят с опущенными крыльями, закрыв глаза и свесив голову;
  • пенистый зловонный понос, цвет кала варьируется от серого, желтого до зелено-коричневого оттенка;
  • в некоторых случаях из-за нарушения кровообращения голова приобретает синюшную окраску.

Болезнь длится 7 дней, перед гибелью отмечаются конвульсии и параличи.

При вскрытии павших птиц обнаруживаются следующие особенности:

  • поверхность слепых кишок покрыта мраморным рисунком;
  • в кишечнике видны темно-желтые скопления фибрина в виде пленок, слоистых слепков или крошащейся творожистой массы;
  • слизистая гиперемирована, отмечаются округлые язвенные элементы и белесые комочки;
  • при перитоните кишки тонкого и толстого отделов спаяны;
  • печень увеличена, на поверхности хорошо видны округлые желтовато-белые очаги некроза.

Гистомоноз ставится при выявлении паразита в содержимом кишок и соскобах печени.

Важно! Хроническое течение инфекции отмечается у повзрослевших птенцов и взрослых индеек: наблюдается резкое снижение веса, побледнение сережек, периодически возникающие поносы. Молодая птица гибнет спустя 3 месяца, взрослые особи могут жить с инфекцией на протяжении всей жизни.

Возбудитель болезни

Гистомоноз развивается вследствие проникновения в организм индейки одноклеточного паразита Histomonas meleagridis. Возбудитель обитает в полости слепых кишок и паренхиме печени.

Разрушительное влияние микроорганизма на слизистую пищеварительного тракта вызывает воспаление и обширный некроз тканей, нарушение обменных процессов и интоксикацию.

Начальная стадия гистомонад – жгутиковая форма, затем они переходят в амебовидную фазу, которая и повреждает слизистую органов пищеварения.

Важно! Трофозоиды в жгутиковой стадии не могут самостоятельно существовать во внешней среде, для жизни им нужен организм хозяина. Обитают они в яйцах круглых гельминтов Heterakis gallinarum, с которыми и попадают в организм птицы алиментарным путем.

Инфекцию распространяют больные птицы и носители паразитов через кал, зараженный нематодами. Наиболее восприимчивы к гистомонозу индюшата в возрасте с 2 недель до 3 месяцев.

У них заболевание протекает остро, а иногда стремительно, в 70% заканчивается летальных исходом.

Взрослые особи переносят болезнь хронически, без видимых признаков инфекции.

Симптомы могут проявиться зимой, когда снижается иммунная защита вследствие низких температур и недостатка кормления.

Гистомоноз развивается в хозяйствах, в которых не соблюдаются санитарные и гигиенические требования к содержанию птицы.

Факторами распространения инфекции выступают:

  • отсутствие вентиляции;
  • повышенная влажность;
  • теснота в птичнике;
  • старая подстилка;
  • несвежие корма;
  • загрязненные землей корнеплоды;
  • совместное содержание разновозрастных птиц;
  • отсутствие дезинфекции птичника.

Гистомонад переносят блохи, мухи и другие насекомые, яйца глистов могут передаваться при транспортировке. А также инфицирование происходит через дождевых червей, в которых могут находиться зараженные личинки Heterakis gallinarum.

Что делать при выявлении болезни

При появлении признаков гистомоноза и постановке диагноза важно предотвратить развитие эпидемии в хозяйстве.

Какие меры требуется предпринять:

  • больных и подозрительных особей изолировать от здоровой птицы;
  • провести полную дезинфекцию инвентаря и помещения, где содержится птица;
  • участок выгула по возможности перекопать, засыпать известью или обработать 3%-м раствором карболовой кислоты, едкого натра;
  • ослабевших птенцов с признаками истощения забить, тушки уничтожить.

Если индюшка не сильно истощена, внутренности сжигают, мясо разрешается использовать в пищу после термической обработки.

Для кого болезнь опасна и меры предосторожности

Помимо индеек, гистомонозом страдают куры, в особенности цыплята, но у них паразитарная инвазия протекает в подострой форме, лучше поддается терапии лекарственными препаратами. Среди молодняка смертность составляет 10-20%.

Инфицирование гистомонадами возможно у перепелов, цесарок, а также диких птиц: фазанов, куропаток, тетеревов, голубей, даже павлинов и страусов.

Нередко болезнь диагностируется у гусей и уток, протекает без симптомов, они являются хроническими носителями инфекции. Для человека гистомонады не опасны.

Чтобы не допустить заражения индюков в хозяйстве, важно соблюдать меры предосторожности:

  • птиц разных пород следует содержать отдельно;
  • не допускать совместного проживания индюков разных возрастных групп и большого количества птиц на малой площади;
  • организовать сухой и освещенный выгул;
  • перекрыть доступ диких птиц к домашним;
  • складировать помет на изолированном участке, куда индюки не имеют доступа.

В обратном случае создать эффективный барьер для распространения инфекции будет невозможно.

Какие методы профилактики помогают

Для предупреждения инфицирования гистомонозом при содержании индеек и другой домашней птицы требуется проводить профилактические мероприятия и придерживаться санитарно-гигиенических норм.

Какие методы применять:

  • регулярно осуществлять дезинфекцию птичника;
  • поддерживать оптимальную температуру и влажность воздуха в помещении;
  • не допускать скученности поголовья;
  • выращивать молодняк на сетчатых полах;
  • использовать качественные корма;
  • составлять разнообразный и сбалансированный рацион, включать в питание витаминные комплексы;
  • не допускать в маточное поголовье особей, перенесших заболевание.

В профилактических целях в корм добавляют противопротозойные препараты и антибиотики, для предупреждения глистной инвазии в пищу вводят противогельминтные средства.

Как лечить гистомоноз индеек и кур

Лечение заболевания даст результат на начальной стадии болезни, в случае запущенной формы больную птицу забивают, внутренности сжигают. Мясо разрешается употреблять в пищу после проваривания.

Для устранения паразитов используются противопротозойные препараты, их действие направлено на уничтожение одноклеточных организмов. Какие средства применяются:

Название препаратаДлительность лечения (дней)Доза — г/кг корма
Метронидазолдо 91,5
Фуразолидон100,2-0,4
Тинидазол57,5
Нитазол7-100,5

Конкретную дозировку назначается ветврач исходя из веса и вида птицы. Таблетки измельчают, порошок включают в состав мешанок или растворяют в воде. Если птенцы не пьют, состав вливают в клюв при помощи пипетки.

При гистомонозе гельминты, находящиеся в кишечнике птицы, тоже заражаются одноклеточными трофозоитами, поэтому дополнительно назначаются противоглистные препараты: Пиперазин или Фенотиазин.

Важно! При появлении первых признаков инфицирования важно своевременно обратиться к ветеринарному специалисту. Клиническая картина гистомоноза напоминает течение других инвазионных патологий: пуллороза и кокцидиоза, а неправильно подобранное лечение способно значительно сократить поголовье птицы.

Заключение

Индюки требовательны к содержанию и качеству корма, сырость и грязь губительны для птицы, а проникновение инфекции способно полностью погубить молодое поголовье.

Поэтому при выращивании птицы так важно предотвратить распространение инфекции и своевременно начать лечение.

Ссылка на основную публикацию
Adblock
detector